在分子生物学实验中,同样的提取试剂、同样的操作流程,有时 RNA 降解、核酸得率却不稳定——问题可能不在样本,而在你每天取用的那一管水。DNA/RNA 提取对实验用水的要求,不只是"够纯",还包括核酸酶活性、外源核酸污染,以及取水过程中的二次污染控制。本文从四项核心要求出发,说明为什么 18.2 MΩ·cm 并不等于"核酸级适用",以及实验室应该如何选择和管理实验用水。

分子生物学实验用水:超纯水系统为 PCR、qPCR、核酸提取提供稳定基础水源

在分子生物学实验中,DNA/RNA 提取是 PCR、qPCR、基因测序、分子克隆及转录组分析等研究的基础环节。通常都会重点关注样本质量、裂解效率、提取试剂和纯化方法,却容易忽视一个看似普通、实际上可能影响核酸质量的因素——实验用水。

为什么同样的提取试剂和操作流程,有时会出现 RNA 降解、核酸得率不稳定,或后续 PCR/qPCR 实验结果异常?除了样本本身和操作因素外,还需要关注水中是否存在核酸酶、残留离子、有机物及其他污染物,以及取水、储存和使用过程中是否引入了二次污染。

一、DNA/RNA 提取为什么对实验用水有特殊要求?

DNA 和 RNA 都是对实验条件较为敏感的生物大分子,但两者面临的污染风险有所不同。

DNA 提取过程中,如果水或相关试剂受到 DNase(脱氧核糖核酸酶)污染,可能导致 DNA 链被降解,影响后续扩增、测序等实验。对于需要进行痕量核酸检测的应用,外源 DNA 污染也可能引入额外的检测信号。

RNA 的保存和处理通常需要更加严格地控制 RNase(核糖核酸酶)。RNase 广泛存在于实验环境中,且部分 RNase 稳定性较高,少量污染就可能影响 RNA 的完整性。即使提取流程本身没有明显问题,水、移液器吸头、离心管或操作人员也可能成为污染来源。[1][2]

因此,核酸提取对实验用水的要求并不只是"水够不够纯",还包括水是否适用于核酸实验,以及整个使用过程能否有效控制污染。

左侧受保护的 DNA 双螺旋与右侧被核酸酶攻击断裂的 RNA 链扁平插画

左:完整 DNA 受无核酸酶水环境保护;右:RNA 链暴露于核酸酶污染时发生断裂降解

二、DNA/RNA 提取对实验用水的四项核心要求

不含可检出的 DNase 和 RNase 活性(最关键)

对于 DNA/RNA 提取,尤其是 RNA 提取、RNA 洗脱以及后续逆转录等实验,应根据实验流程选择经相应检测或认证的 Nuclease-free Water(无核酸酶水)。需要注意的是,无核酸酶水通常经过针对性的处理和质量检测,其判定依据与常规水质检测不同。例如,无核酸酶水的供应商会针对 DNase、RNase 活性进行相应检测;用于 PCR/qPCR 的水,还可能需要控制外源核酸污染,以降低非特异性信号或假阳性的风险。[1]因此,实验室在选择用水时,应区分两个层面:

  • 基础水质纯度:关注离子、有机物、颗粒及微生物等污染水平。
  • 分子生物学适用性:关注 DNase、RNase 活性,以及特定实验对外源 DNA/RNA 污染的控制要求。

离子和有机物背景应保持在较低水平

在试剂配制、核酸洗脱及后续酶促反应中,水中的残留离子可能影响体系的盐浓度和反应条件;有机物背景则可能干扰某些对污染物敏感的分析流程。因此,对于要求较高的分子生物学实验,实验室通常会使用高纯度或超纯水作为配制试剂的基础用水,并根据具体实验要求,进一步控制水质背景。

常见的超纯水参考指标包括:

关注指标 主要作用 对核酸实验的意义
电阻率 反映水中离子含量的总体水平 评估水的离子纯度
总有机碳(TOC) 反映水中有机碳的总体水平 辅助评估有机物背景
颗粒水平 反映水中的颗粒污染情况 降低颗粒及相关污染风险
微生物指标 反映水中微生物污染状况 辅助评价水质与储存、取水环节的卫生状况
核酸酶活性 评价是否存在可检出的相关酶活性 直接关系到 DNA/RNA 的完整性保护

电阻率、TOC、颗粒和微生物指标不能直接证明水中不存在 DNase 或 RNase。对于要求无核酸酶的实验,仍需依据对应的检测结果、产品认证及实验流程进行判断。

控制微生物及取水过程中的二次污染

水在储存、转移和取用过程中,可能接触容器内壁、空气、操作人员的手部,以及移液器吸头等物品。若储水容器未充分清洁、取水容器反复使用,或不同实验之间缺乏有效的分区管理,都可能增加污染风险。在 RNA 实验中,这类风险尤其值得重视。建议实验室从以下几个方面进行管理:

  • 使用洁净、适用于核酸实验的容器和耗材,优先选择经过相应无核酸酶质量控制的产品。
  • RNA 操作过程中佩戴手套,必要时及时更换,并保持工作台及设备表面清洁。
  • 避免长时间敞口放置实验用水,尽量减少不必要的转移和反复取用。
  • 对高要求实验使用独立、洁净的取水容器,并按照实验室规范管理储水和取水过程。

这些措施可以帮助降低外源核酸酶及其他污染物的引入概率,但不能替代对实验用水本身的质量控制。[2]

根据实验用途选择合适的水,而不是一味追求单一指标

DNA/RNA 提取的不同步骤,对水的要求并不完全相同。

实验环节 用水选择建议 特别关注
提取试剂、缓冲液配制 按试剂配方和实验方案选用适当等级的纯水或超纯水 离子、有机物背景及试剂兼容性
DNA/RNA 洗脱 优先遵循试剂盒说明书,通常使用指定的洗脱液或无核酸酶水 核酸酶污染、洗脱条件及后续用途
RNA 重悬和处理 优先使用经相应检测的无核酸酶水或指定缓冲液 RNase 污染和 RNA 完整性
PCR、qPCR 或逆转录体系配制 使用符合相应分子生物学要求的试剂级用水 核酸酶及外源核酸污染、酶促反应兼容性
核酸样本长期保存 根据核酸类型、保存时间和下游应用选择适当保存介质 保存稳定性、反复冻融及残留核酸酶风险

无核酸酶水不等于所有实验都可以直接使用的通用水。同样,DEPC 处理水也不应被默认用于所有核酸实验。DEPC 处理后的水需要适当的后续处理;对于 PCR 等酶促反应,应充分考虑残留 DEPC 或相关副产物对反应体系的潜在影响,并遵循试剂说明书。[1]

三、超纯水的电阻率达到 18.2 MΩ·cm,就一定适合 DNA/RNA 提取吗?

18.2 MΩ·cm(25℃)是超纯水常见的高电阻率指标,主要反映水中离子含量较低。但它并不是核酸酶活性、外源核酸含量或所有污染物的综合证明。举例来说,即使两份水的电阻率相近,它们在有机物背景、微生物污染、颗粒水平及核酸酶活性方面,仍可能存在差异。

评价 DNA/RNA 提取用水,应同时关注三个层面:

  • 制水能力:系统是否能够稳定提供满足实验要求的高纯度水,是否具备适当的离子、有机物及颗粒控制能力。
  • 系统设计与取水管理:储水方式、水路材料、终端过滤配置及日常维护,是否有助于降低储存和取水过程中的二次污染风险。
  • 针对性的质量确认:如果实验明确要求无核酸酶或无外源核酸,应对最终使用的水进行相应的质量确认,不能仅依据设备显示的电阻率或 TOC 数值作出结论。

这也意味着,实验室纯水系统与无核酸酶试剂承担的是不同角色:前者负责提供稳定、洁净的基础水源,后者则需要满足更具体的分子生物学质量要求。两者合理配合,才能更好地支持核酸实验。

四、Deepflow 如何为 DNA/RNA 提取提供稳定的基础用水?

对于分子生物学实验室而言,纯水设备不仅需要达到相应的基础水质指标,还应兼顾水质稳定性、取水便利性,以及长期使用过程中的污染控制。

Deepflow 面向实验室纯水与超纯水应用提供相应的系统解决方案。其中,Apex 1003 旗舰至纯·超纯水机可作为实验室高纯度用水配置的参考。采用双 DI 纯化工艺,主要性能指标包括:

  • 18.2 MΩ·cm 超纯水电阻率:在 25℃ 条件下,提供高离子纯度的超纯水,适合对基础用水纯度要求较高的实验室场景;
  • TOC ≤ 2 ppb:为对有机物背景较敏感的实验提供基础用水支持。
  • 颗粒与微生物控制:在使用相应终端过滤器的条件下,系统可实现大于 0.22 μm 颗粒为 0、细菌总数小于 0.01 CFU/mL。
  • 全密闭柔性水袋储水:通过全密闭柔性水袋储水设计,减少储水过程中与外界空气接触的机会,帮助降低二次污染或交叉污染风险。

全密闭柔性水袋储水:隔绝空气接触,降低储水过程中的二次污染风险

对于 DNA/RNA 提取场景,Deepflow 可为试剂配制、实验前处理及其他高纯度用水环节提供稳定的基础水源,涵盖 PCR、qPCR、DNA 提取、基因测序等分子生物学相关实验。Deepflow 在纯水与超纯水系统研发中强调从材料、系统结构、水质指标到真实应用场景的综合验证。这种思路同样适用于核酸实验用水的选择:不仅要关注设备的标称参数,还要考虑水到达最终使用点后,是否仍能满足实际实验的质量要求。

五、DNA/RNA 提取用水的日常质量管理:建议关注这五个细节

即使配置了性能良好的超纯水系统,日常操作仍然会影响最终用水质量。实验室可以从以下几个方面建立更清晰的管理流程。

  • 区分基础纯水与无核酸酶水:常规试剂配制与关键核酸实验的用水要求应有所区分,必要时使用经过相应检测的无核酸酶水。
  • 关注最终取水点:不仅要关注设备产水指标,也要关注管路、储水容器、取水口及转移容器可能引入的污染。
  • 减少不必要的储存与转移:按需取水,及时密闭,避免长期敞口放置;对于需要保存的核酸样本,应按照规定的保存条件管理。
  • 重视耗材和操作环境:使用适当的无核酸酶离心管、吸头和试剂,并做好手套更换、工作台清洁与操作分区。
  • 必要时设置空白对照:当 DNA/RNA 得率异常、RNA 完整性下降或 PCR/qPCR 出现异常信号时,除检查样本、提取试剂和操作步骤外,也应结合实验方案排查水源及相关耗材污染。

结语

DNA/RNA 提取对实验用水的要求,既涉及基础水质纯度,也涉及核酸酶活性、外源核酸污染以及储存和取水过程中的污染控制。Deepflow 通过实验室纯水与超纯水系统,为分子生物学实验提供高纯度基础用水支持。将稳定的制水能力与规范的无核酸酶试剂管理相结合,有助于降低用水环节带来的不确定性,为 DNA/RNA 提取、PCR/qPCR 及基因测序等实验提供更可靠的用水基础。

Deepflow:为分子生物学实验提供高纯度基础用水

Deepflow 是上海泰坦纯源仪器有限公司(泰坦科技旗下)自主品牌,专注实验室纯水与超纯水领域,产品覆盖 Apex、Prime、Core、Direct、Basic 实验室纯水超纯水系统、Edison 中央水处理系统,以及进口纯水系统兼容替换耗材。

双 DI 深度纯化。Apex 1003 旗舰至纯·超纯水机电阻率 18.2 MΩ·cm(25℃),TOC ≤ 2 ppb,适配 PCR、qPCR、DNA 提取、基因测序等分子生物学应用。

颗粒与微生物控制。配套终端过滤器条件下,大于 0.22 μm 颗粒为 0,细菌总数小于 0.01 CFU/mL。

全密闭柔性水袋储水。减少储水过程中与外界空气接触,降低二次污染与交叉污染风险。

参考资料:[1] Nuclease-Free Water 相关处理与检测规范;[2] RNA Cleanup 操作中核酸酶污染控制指南。

DNA/RNA 提取对实验用水有哪些要求?从核酸酶控制到超纯水系统选择

创建时间:2026-11-04
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